专利名称：刺激宿主抗病毒攻击的防御机制的制作方法
技术领域：
本发明涉及通过口粘膜给药刺激宿主哺乳动物体内的宿主防御机制对抗引起病理学条件反射的方法。具体地说，本发明可应用于治疗自身免疫病、分支杆菌病、神经退化性疾病、寄生虫病和病毒病的方法。
本发明的背景技术α干扰素(IFN-α)广泛用于治疗各种各样的疾病，包括白血病、淋巴瘤、与爱滋病相关的卡波西氏肉瘤和肝炎(Gutterman,J.U.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,1994 91:1198-1205)。β干扰素(IFN-β)已被批准临床用于治疗复发-缓解性多发性硬化症及乙肝病毒的慢性感染。α干扰素和β干扰素都是Ⅰ型干扰素。虽然通常有许多途径可用于Ⅰ型干扰素给药，包括静脉内、皮下、肌肉内、局部和损伤部位内注射，但是口腔途径尚未使用，因为人们认为干扰素是一种因蛋白水解酶失活的蛋白质，并且在胃肠道内不能以其天然形式吸收。确实有许多研究未能在口服给药后在血液中检测到干扰素(Cantell and Pyhala,J.Gen.Virol.,1973 20:99-104；Wills等人，J.IFN Res.,1984 4:399-409；Gilson等人，J.IFN Res.,1985 5:403-408)。
已显示干扰素诱导剂能够保护小鼠抵御波黑疟原虫(Plasmo-dium berghei)疟疾的实验性感染，并且这种保护作用对子孢子引起的感染比对寄生虫的血液形式引起的感染有效得多(Jahiel等人，Science.1986,16:1802；Nature,1968,220:710；Amer.J.Trop.Med.Hyg.,1969,18:823)。经腹腔内或静脉内途径注射了在感染新域病病毒的小鼠的混合血清中的干扰素的小鼠受到保护使之避免子孢子诱发的波黑疟原虫疟疾。然而，来自兔血清的干扰素是无效的。在寄生虫发育的原红细胞阶段(即在接种子孢子前3小时或接种后不超过40小时[Jahiel等人，Nature1970,227:1350-1351])注射干扰素可获得保护作用。
迄今已有许多关于在治疗各种病毒性疾病特别是在治疗流感中作为鼻喷雾剂或口服液体配方给药的小剂量干扰素的效力的轶事性报道。但在大多数报道中，所使用的干扰素制剂都是比较粗制的。用较高剂量鼻内干扰素治疗鼻病毒感染的安慰剂对照试验显示治疗是有效的，但副作用的发病率相当高(Hayden等人，J.Infect Dis.,1983,148:914-921)。同样，虽然有许多包括随机双盲临床试验的研究(Douglas等人，New Engl.J.Med.,1986,314:65-80；Hayden等人，NeωEngl.J.Med.,1986,314:71-75)已经证明通过鼻饲给药投用高剂量重组干扰素α2在抗鼻病毒感染中的效力，但这些研究并没有提供有关全身作用的证据。
最近有一系列专利说明书描述了使用低剂量口服给药的异种来源的干扰素治疗家畜的感染性鼻气管炎(“运输热”)和猫白血病，以及在治疗其他病症、增强疫苗的效力、改善食物利用的效率、以及预防牛泰勒氏梨浆虫病中的用途。分别参阅美国专利No.4,462,985、澳大利亚专利No.608519、澳大利专利No.583332和美国专利No.5,215,741。在这些说明书中，所使用的干扰素都是按Cantell的方法制备的、加在磷酸盐缓冲盐水中以每磅体重0.01至5IU的剂量给药的人α干扰素。虽然这些说明书中都提出如此低剂量的经口咽粘膜并优选以适合与口粘膜长时间接触的方式给药的干扰素对各种病症可能是有效的，但除了运输热、猫白血病、犬细小病毒感染和泰勒氏梨浆虫以外的病症的实验证据大都是轶事性的。
已经有人对近年来有关通过口或口咽粘膜给药的非常低剂量干扰素的效果的研究结果进行了综述(Bocci,Clin.Pharmacokinet.,1991,21:411-417；Critic.Reu.Therap.Drug Carrier Systems.1992,9:91-133；Cummins and Georgiades,Archiuum.Immun.Therap.Exp.,1993,41:169-172)。已有人提出这种类型的治疗对于治疗HIV感染是特别有用的，并且至少可以改善爱滋病患者的生存质量(Kaiser等人，AIDS,1992,6:563-569；Koech等人，Mol.Biol.Ther.,1990,2:91-95)。然而，其他一些报告指出这些治疗并没有提供临床益处。也已有人报告了使用包含低剂量干扰素的含片治疗乙型肝炎的阶段Ⅰ的研究结果(Zeilinska等人，Archiv.Immunol.Therap.Exp.,1993.41:241-252)。
相反，Brigham和Women′s Hospital的国际专利申请WO95/27499指出按充分认定的动物模型如果在诱导抗原之前借助胃管法给药的β干扰素至少可以部分地抑制如Ⅰ型糖尿病、多发性硬化症及自身免疫性关节炎等自身免疫病的发展。借助这种途经或腹腔内途径与胃内“旁观者”抗原结合给药的β干扰素在诱导耐受性方面甚至更有效。这意味着β干扰素在提高口服耐受性的诱导作用中是有效的，而不是在诱导体液或细胞对外源性抗原的反应方面有效。
本发明概述本发明提供一种借助干扰素经口粘膜给药刺激哺乳动物宿主防御机制的方法。一个方面，可以将本发明看作是一种经口粘膜接触将免疫调节量的干扰素提供给哺乳动物刺激哺乳动物体内免疫反应的方法。
本发明提供一种借助口粘膜接触将治疗有效量的干扰素提供给哺乳动物治疗哺乳动物的自身免疫病、分支杆菌病、神经退化性疾病、寄生虫病和病毒性疾病的方法。干扰素的给药量小于经胃肠道外给药时诱发病理学反应的量。本发明提供治疗诸如关节炎、Ⅰ型糖尿病、狼疮和多发性硬化症之类的自身免疫病、诸如麻风和结核病之类的分支杆菌病、诸如海绵状脑炎和Crelltzfeldt-Jakob病之类的神经退化性疾病、疟疾之类的寄生虫病、以及诸如宫颈癌、生殖器疱疹、乙型和丙型肝炎、HIV、HPV、HSV-1和HSV-2之类的毒病的方法。
口粘膜给药可包括以单次量完成有效剂量干扰素的给药，也可以在足以引发相当于单次量的宿主防御刺激作用的时间里以多次较小剂量完成有效剂量的给药。类似地，有效剂量的干扰素还可以在足以引发相当于单次量的宿主防御刺激作用的时间里连续给药。
实践中，每天给药从大约1500IU、优选从500IU，到大约20×106IU的干扰素，更优选的是从每天大约1×104IU到大约1×106IU的干扰素，条件是选定的剂量经胃肠道外给药时不诱发病理学反应，即少于经胃肠道外给药时诱发病理学反应的量。这些剂量范围通常是指人体中的同源干扰素-α。用特定的干扰素为患者治病的医生将能够很容易地依据本发明识别适当的治疗剂量范围。
在另一个实施方案中，本发明提供适于经口粘膜给药的药物组合物，该药物组合物包括至少一种治疗有效量的干扰素。该组合物可以作为溶液、片剂、锭剂、凝胶、糖浆、软膏或作为经口粘膜的控释给药系统来提供。组合物还可以非必选地包含缓冲剂、稳定性、增稠剂、吸收增强剂和增粘剂等。
在一个实施方案中，该药物组合物是以单位剂量形式提供的，其中含有从大约1500IU、优选从大约5000IU到大约20×106IU的干扰素，更优选的是从大约1×104IU到大约20×106IU的干扰素，最优选的是从大约1×104IU大约1×106IU的干扰素。
在实践中，该方法可以作为单独的治疗手段，也可以作为其他治疗的辅助疗法，还可以使用白介素-2、-12或-15之类的其它细胞因子，或使用IFN诱导剂。
在实践中，该方法使用Ⅰ型或Ⅱ干扰素，选自IFN-α、β、-γ、-ω和共有IFN，优选的是采用重组的IFN-α。
本发明的详细叙述现在将仅仅参照下述定义和实施例详细介绍本发明。文中提到的所有专利和出版物均被并入，以供参考。定义文中所述“干扰素”是指包括那些通常用α、β、γ和ω命名的干扰素在内的Ⅰ型或Ⅱ干扰素，以及它们的混合物，包括共有序列。干扰素可从各种商业来源得到，并且已被批准用于治疗多种病症。干扰素可以来自天然的来源，但优选的是重组产品。就本发明的目的而言，术语“干扰素”还包括具有干扰素活性的多肽或其片段，以及在诸如美国专利No.5,582824、5,593,667和5,594,107中揭示的，例如为了在不影响其生物学活性性质的条件下提高稳定性而引入了顺序变体的嵌合或突变形式的干扰素。
虽然人们将会清楚地理解本发明可应用于任何刺激宿主防御机制(即免疫刺激作用)将带来益处的病症，但优选的是所述病症是自身免疫病或病毒感染或寄生虫感染。人们还应当理解就本发明的目的而言干扰素可以单独使用也可以与另一种药剂或治疗方法结合使用。
干扰素可以非必选地与干扰素合成和释放的诱导剂同时给药。诱导剂可以与干扰素一起给药，也可以分别给药。各种各样的干扰素诱导剂是已知的，例如象poly I:C之类的多核苷酸；优选的是使用低分子量的、可口服给药的诱导剂。适用的诱导剂在本领域中是已知的，例如双二乙氨乙基芴酮Tilorone(美国专利No.3,592,819；Albrecht等人，J.Med,Chem.,1974 17:1150-1156)和喹诺酮衍生物Imiguimod(Savage等人，Brit.J.Cancer,1996 74:1482-1486)。
本发明的方法和组合物可以非必选地与一种或多种其他疗法结合、治疗特定的病症，并且值班医生或兽医将能够很容易地选择适合该条件的其它疗法。
病毒引起的病症可以是急性或暴发性感染，如鼻病毒、流感、水痘疱疹、带状疱疹、登革热，或包括但不只限于麻诊病毒脑炎、Marray Valley脑炎、日本乙型脑炎、森林脑炎和Herpes脑炎在内的病毒性脑炎；如Ebola病毒、Marburg病毒、粒沙热引起的出血热；Hanta病毒感染，以及由动物传播给人的其他病毒如马麻疹病毒感染。其中有许多感染目前还没有治疗办法和/或可利用的设苗，并且支持性治疗可能是不够的。另外，病毒引起的病症可能是慢性感染的结果，例如乙型肝炎、丙型肝炎、丁型肝炎或其他病毒性肝炎，以及CMV、HIV、HPV、以及HSV-I&Ⅱ染。目前乙型肝炎和丙型肝炎都是用干扰素经胃肠道外给药治疗的；对于已发展成爱滋病的HIV感染的长期干扰素治疗正在临床试用之中。
在第二个实施方案中，待治疗的疾病是疟病，并且再次如上所述的那样实施Ⅰ型和Ⅱ型干扰素的给药。疟病的病原生物体可以是三日疟原虫(Plasmokium malariae)、间日疟原虫(Plasmo-diumvivas)、恶性疟原虫(Plasmodium falcoparum)、或卵形疟原虫(Plasmodium orale)。特别期待的是，本发明的方法将阻止疟疾恶化成脑型疟疾。
在第三个实施方案中，本发明提供一种治疗诸如HIV感染、类风湿性关节类及多发性硬化症之类的自身免疫机能障碍(无论是恢复-缓解型的还是慢性进行性的)或治疗爱滋病之类免疫缺陷的方法，该方法包括上述的干扰素给药步骤。
另外，本发明的方法和剂量形式可以与其他治疗联合使用。例如，对于疱疹病毒感染可以用阿若洛韦(acyclovir)或更昔洛(ganciclovir)。对于HIV感染，可以使用叠氮胸苷(阿西夫定)或一种或多种其他HIV反转录酶抑制剂，和/或HIV蛋白酶抑制剂。
在制备本发明的药物组合物时可以使用本领域技术人员熟知的各种用于IFN的载体和赋形剂。在Remington:The Science andPractice of Pharmacy(19th ed.,Mack Publishing Co.,Easton,PA,1995)及其较早的版本中教导了有代表性的配制技术。IFN配方可以包括稳定性增强剂(如美国专利No.4,496,537所介绍的甘氨酸或丙氨酸)和/或的一种或多种载体(如载体蛋白质)。例如，为了给人治病，通常使用药品级人血清白蛋白，并且可非必选地使用磷酸盐缓冲盐水作为稀释剂。在IFN的赋形剂是人血清白蛋白时，人血清白蛋白可以来源于人血清，也可以是重组源的。在正常情况下所用的血清白蛋白是同源的。
IFN可以借助任何使IFN与受体的口粘膜腔接触的方式给药。因此，人们将清楚地理解，本发明不限于任何具体类型的配方。本说明书介绍深入口粘膜腔的IFN给药；这可以通过液体、固体、气溶胶、以及滴鼻剂或喷雾剂来实现。因此，本发明包括但不只限于液体、气雾剂、糖浆、锭剂、含片和喷雾剂配方。本领域技术人员将能理解制剂的粒度对气溶胶或喷雾剂的配制可能至关重要，并且知道适合用于调整粒度的方法。
一方面，以每日一次的剂量实施干扰素给药。另一方面，干扰素也可以在一段时间内以多次低剂量方式给药，以使总效果相当于单次高剂量的给药。实现这种给药方式的一种途径是借助附着在或植入到口粘膜腔中并为在一段时间内持续地或受控地释放相当于单次高剂量干扰素设计的装置提供的。
有代表性的适合口粘膜给药的干扰素配方包括下列制剂(所有百分比均为重量百分比)片剂右旋糖BP45％；白明胶BP30％；小麦淀粉BP11％；羧甲纤维素钠BP5％；卵白蛋白BPC4％；亮氨酸USP3％；丙二醇BP2％；和1×106IU的IFN-α2。片剂可以原样使用并让它在口中缓慢地溶解，也可以溶解在水中并且在需要时含在嘴里与口粘膜保持接触。
干扰素软膏可以象在美国专利No.4,615,184中介绍的那样由甘油45％、羧甲纤维素钠2％、柠檬酸盐缓冲液(PH4.5)25％、加至100％的蒸馏水，以及l×106IU的IFN-α2制备。干扰素软膏可以粘附在口颊粘膜上。
同样，含漱液或糖浆可以借助在市售的嗽口液或止咳糖浆中添加所需量的干扰素来制备。
在上文提到的特定剂量范围内，在任何个别病例中最佳治疗方案取决于所涉及病症的性质、疾病的阶段、前期治疗、正在继续的其他治疗、该哺乳动物的一般健康状况、治疗对象对干扰素的敏感性等因素，因此将任凭医生或兽医考虑所有这些情况自行处理。疗程长短当然将随被治疗的病情变化，例如，急性病毒感染(如Ebola病毒感染)的治疗可能将涉及不同于治疗慢性病症(如肝炎)的疗程。
本文所揭示的有效剂量是经胃肠道外途径给药时在哺乳动物体内不产生病理学反应的剂量。病理学反应可以是急性的、慢性的或累积性的，并可以由血液化学，例如白细胞减少、骨髓抑制或其他组织学参数的变化体现出来。本文所用术语“病理学反应”包括发烧、不适、或类似流感的症状之类的不良的副反应；血管反应(如静脉炎)；以及在注射部位的局部炎症。从个体对干扰素敏感性的差异来看，这些反应在病人群体中有很大不同。一种鉴别经口粘膜治疗时可接受的低剂量干扰素的简单试验是依据病人的年龄、体重、症状、病程等因素给病人注射公认可接受的剂量，并确定注射是否产生在此定义的病理学反应，在注射部位的局部刺激作用是最容易判断的标准。如果没有不良反应，相同的剂量就可以经口粘膜给药。如果有不良反应，则应以较低剂量重复实验，直至找到无病理学反应的剂量为止。
对于许多病人来说，预期经口粘膜给药的剂量将与按现已批准的胃肠道外给药议定书已知允许使用的有效剂量差不多是一样的。因此，就具体的病例而言，可接受的干扰素低剂量可以从每天大约1500IU，优选5000IU至大约20×106IU。更优选的剂量是从每天大约1×104IU至大约20×106IU干扰素，最优选从每天从大约1×104IU到大约1×106IU干扰素，条件是该剂量在经胃肠道外给药时不诱发病理学反应。在一个实施方案中，总剂量可以在同样时间里以多次低剂量方式给药，甚至可以从附着在或植入到口粘膜的控释装置以连续或脉动方式给药。干扰素和干扰素配方小鼠IFN-α/β小鼠IFNα/β(Mu IFN-α/β)是由新城疫病毒(NDV)诱导的C243-3细胞的培养基制备的，并且象以前介绍的那样(Tovey等人，Proc.Soc.Exp.Biol.and Med；1974 146:809-815)纯化。在这项研究中使用的制剂具有4×106国际单位(IU)/ml的滴度并且具有5×107IU/mg蛋白质的比活性，这是象以前介绍的那样(Tovey等人，Proc.Soc.Exp.Biol.and Med；1974 146:809-815)在受疱疹性口腔炎病毒(VSV)攻击的小鼠929细胞上检测的结果。该制剂比照美国国立卫生研究所(NIH)的小鼠IFNα/β国际基准制剂(G-002-9004-5411)进行标准化处理。
人IFN-α1-8重组的人IFN-α1-8(Hu IFN-α1-8；BDBB批号CGP35269,Ciba-Geigy,Basel,Switzerland)象以前介绍的那样(Meister等人；J.Gen,Virol；1986 67:1633-1643)制备并纯化的。在研究中使用的制剂象以前介绍的那样(Tovey等人；Nature,1977 267:455-457)在受VSV攻击的同源的人WISH细胞上具有70×106IU/ml的滴度，而在异源的鼠L929细胞上具有1×106IU/ml的滴度。该制剂比照NIH人IFN-α国际基准制剂(G-023-901-527)和小鼠IFNα/β标准(G-002-9004-5411)进行标准化。该IFN制剂的比活性为2×108IU/mg蛋白质。
重组小鼠干扰素-α重组小鼠干扰素-α购自Life Technologies公司。在这项研究中使用的制剂(批号HKK404)在受VSV攻击的小鼠L929细胞上检测时具有具有6×106IU/ml的滴度和6×108IU/mg蛋白质的比活性(Tovey等人；Proc.Soc.Exp Biol Med.,1974 146:406-415)。
重组小鼠干扰素-β重组小鼠干扰素-β购自R&D Systems公司。在这项研究中使用的制剂(批号1976-01S)在受VSV攻击的小鼠L929细胞上检测时具有具有3.2×104IU/ml的滴度和8×106IU/mg蛋白质的比活性(Tovey等人；Proc.Soc.Exp Biol Med.,1974 146:406-415)。
重组小鼠干扰素-γ重组小鼠干扰素-γ购自R&D Systems公司。本研究所用的制剂(2580-03SA)在受VSV攻击的L929细胞上检测时具有2×105IU/ml的滴度和1×107IU/mg蛋白质的比活性(Tovey等人；Proc.Soc.Exp Biol Med；1974 146:406-415)。
所有的干扰素制剂同时以相同的检定法滴定，并比照美国国立卫生研究所(NIH)的小鼠干扰素α/β国际基准制剂(G-002-9004-5411)进行标准化处理。
小鼠干扰素α/β和重组小鼠干扰素两者均在给药前用FerimmuneTM赋形剂重新配制。赋形剂干扰素制剂用含有牛血清蛋白质(BSA)的磷酸盐缓冲盐水(PBS)稀释。将牛血清血蛋白成分V(RIA级，无免疫球蛋白；药品批号A7888；Sigma,VSA)以100μg/ml的最终浓度溶解在PBS中(pH7.4)并过滤除菌(0.2μ,Millex-GV,Millipore,USA)。
在本文中介绍的实验中，使用专有赋形剂稀释干扰素制剂。所用的赋形剂(Ferimmune harma,Pacific)是以片剂形式供应的，其组成如下<
>**在无水基础上计算的***推导自右旋糖(葡萄糖)BP(无水的) 44.64％葡萄糖BP(作为葡聚糖40注射剂) 0.03％将一片溶解于1.5ml磷酸盐缓冲盐水中，以16,000g离心15分钟，然后无菌过滤(0.2μ,Millex-GV,Millipore,USA)，并在使用前在4℃下贮存。每天在使用前制备赋形剂。干扰素递送系统初步的实验结果表明用P20 Eppendorf微量移液管将5μl结晶紫施加到正常成年小鼠的每个鼻孔中，这将导致染料几乎立即分布到口咽腔的整个表面上。在施加染料后约30分钟，口咽腔的染色仍很明显。采用同样方式施加带125I-标记的重组干扰素α1-8，获得基本上相似的结果。所以，这种给药方法被用在所有的后续实验中。
就本说明书中介绍的动物实验目的而言，人们将会清楚地理解，有关IFN给药途径的表述“口粘膜”或“口咽”或“鼻内/口”或“鼻内加口”或“in/or”都是指深入鼻腔的IFN制剂给药，以使它迅速分布到口粘膜腔内，即受体动物的口和咽部内，以便与该腔的粘膜衬接触。EMCV(脑心肌炎病毒)分批批号095001截止日期1997年12月制备使用以前描述的方法(Gresser I.Bourali C,Thomas MT,FalcoffE.重复接种干扰素制剂对感染脑心肌炎病毒的小鼠的影响，Pro Soc Exp.Biol Med.,1968年2月，127:491-6)在小鼠L929的细胞上增殖EMCV毒株JH。
特征这项研究所用的病毒原液在小鼠L929细胞上的滴度为5×108.62TCID50。
贮存在-70℃贮存EMCV原液。在病毒滴定的第1天断电，被迫暂时转移到温度近似相同的备用库。材料始终保持冻结状态。在病毒滴定的第8天，将-70℃的冰箱温度升至-60℃。即将使用前制备稀释的EMCV，并存放在冰上或动物室冰箱内备用。动物在这项研究中所用的小鼠是从无特异病原体的群体(IFFACREDO,France)获得的。这些小鼠按照EEC标准圈养在无特异病原体的动物试验室内(位于Institut Federatif CNRS,Villejuif)。干扰素的生物检定按照常规方法检定干扰素。简单地说，样品(20μl)用80μl包含2％热灭活的胎牛血清(FCS)(Gibco,France)的Eagle氏极限基本培养基MEM(Gibco,rance)稀释，并且用多道移液管(Finnpipette,Labsystem,50-300ml)添加到微量滴定板(Falcon，批号3072)的每个孔中。将WISH或L929细胞(2×104细胞/孔)添加到包含2％FCS的100μlMEN中并在含5％CO2的空气气氛(Forma3029CO2孵箱)中在37℃下孵化过夜。然后用装有10倍物镜的Olympus IM GLDW倒置显然微镜检查细胞的毒性征象。然后，从1∶10稀释开始以包含2％FCS的总体积为200μl的Eagle氏MEM对未呈现可检出毒性的样品进行连续的加倍稀释，其方法是用多道移液管将100μl稀释材料归入每孔包含100μl新鲜的含2％FCS的Eagle氏MEM的微板上。同时还制备NIH人IFN-α的参考标准(G-023-901-527)或NIH Mu IFN-α/β的参考标准(G-002-9004-5411)的适当的连续加倍稀释液。然后，在适当的环境中用100ml包含2％FCS的Eagle氏MEM将WISH或L929细胞(2×104细胞/孔)添加到每块板上，并在含有5％CO2的空气环境中在37℃下保温过夜。然后检查细胞单层的毒性征象并且没有任何显著的毒性，将培养物抽吸出来并用200μl含有2％FCS和100TCID50的VSV(WISH细胞为2×10-4VSV23，或L929细胞为10-5VSV23)的Eagle氏MEM替代。然后，将这些板在包含5％CO2的空气气氛中在37℃下保温过夜。然后，用Olympus IM VL WD倒置显微镜检查细胞单层有无特异病毒的细胞病变作用。干扰素的滴度是由给出50％抗特异病毒细胞病变效应的稀释度的倒数确定的，并且以国际参考单位/毫升(IU/ml)表示。实施例1经口腔粘膜给药的干扰素的抗病毒感染作用使小鼠腹腔内感染脑心肌炎病毒(EMCV)将引起以累及中枢神经系统和脑炎为特征的迅速恶化的致死性疾病(Rueckart,R.R.,Virology,Fields ed.,705-738,1985,Raven Press,New York)。无论是预防性给药，还是在靶器官内已发生病毒复制后给药，干扰素-α都显示出在阻止小鼠感染致死性IMCV病毒时是有效的(Finter,N.B.,Front of 13:01.,1973,2:135-147)。因此，在这些研究中，我们确定经口粘膜给药的低剂量天然或重组IFN对注射了致死量EMCV的小鼠的存活率的影响，即采用非常严格的抗病毒活性试验。
象以前介绍的那样(Gresser等人，Proc.Soc.Exp.Biol.AndMed.,1968,127:491-496)在小鼠L929细胞上增殖脑心肌炎病毒株(JH)。在这项研究(EMC-α)中使用的病毒原液在小鼠L929细胞上有5×108.62TCID50的滴度。
用200或2000IU的MuIFN-α/β或HuIFN-α1-8经in/or途径治疗小鼠延长了感染致死量EMCV(300LD50)的小鼠的平均存活时间。在所有的6次实验中(表1和表2)，Hu IFN-α/β1-8与Mu IFN-α/β同样有效。
在本研究所进行的9次实验中有6次表明经in/or途径给药的IFN后导致有统计学意义的延长平均存活时间。此外，在所有实验中，总趋势是有效的。
在本研究所进行的8次经ip途径给药的实验中有7次表明经ip途径给药(每次注射200μl)导致平均存活时间显著增加(表1和表2)。
直接比较表1和表2中经ip和in/or给药的数据可以看出，ip途径似乎更有效(7/16例)，或者没有显著差异(9/16例)。
我们的初步数据意味着与每天一次IFN给药(表1和表2)相比，经任何一种途径每天两次IFN给药似乎在预防小鼠感染方面没有显著提高的治疗效果(表3)。
表1干扰素对感染ECMV的小鼠存活率的影响
相对于受EMCV攻击的第0天，在第-2、-1、0、+1、+2和+3天每天一次的干扰素或赋形剂给药。
表2结合IFN-α进行的预防和治疗对注射了375LD50EMCV的Swiss小鼠存活率的影响
相对于受EMCV攻击的第0天，在第-2、-1、0、+1和+2天每天两次干扰素给药。
表3干扰素剂量对感染ECMV后存活率的影
相对于受EMCV攻击的第0天，在第0、+1、+2、+3和+4天每天两次干扰素给药。实施例2预防和治疗EMCV口服感染的相对效率在EMCV感染当天开始IFN治疗并于感染后持续4天，或在病毒感染前4天开始IFN治疗并于感染当天停止用药，用200或2000IU Hu IFN-α1-8经ip或in/or途径治疗的小鼠的平均存活时间相差不大(表3)。
在借助对数秩X2检验(Mantel,1966)时，我们的结果表明，经口粘膜途径给药的低剂量IFN在统计意义上显著延长了感染致死量EMCV的小鼠的存活时间。实施例3口粘膜给药的干扰素抗水泡性口炎病毒的效果以10μl体积的100LD50水泡性口炎病毒(VSV)鼻内感染来自无特异病原体的繁衍种群的数组6周令小鼠，每组10只(Tovey等人，Proc Soc Exp Biol Med.,1974,146:406-415)。在感染病毒七小时后，将留下的小鼠或不作治疗，或用给定剂量的鼠干扰素-α/β加在10μl体积的Ferimmune赋形剂中经鼻内/口途径治疗给小鼠进行治疗，每天1次，治疗4天，或只用10μl赋形剂进行治疗(对照组)。
用鼠α/β干扰素治疗成年小鼠致使感染致死量VSV的动物存活率显著增加。因此，在所有未经治疗的或只用赋形剂进行治疗的(对照组)感染上病毒的动物均于第10天死亡的条件下，有30％经10,000IU IFN-α/β治疗的动物在感染致死量VSV后存活了21天。临床观察表明大多数经干扰素治疗在第21天活着的动物将继续活下去。实施例4口粘膜给药的干扰素对细胞蛋白质表达式的影响已知IFN-α在蛋白质与其细胞表面受体结合后诱导许多细胞的蛋白质表达式。有人认为这些蛋白质提供有用的IFN作用标志。
我们评价了通过in/or途径给药的IFN对三种受IFN诱导的蛋白质(即Ⅰ类MHC抗原、LY 6A/E抗原和2’-5’-寡腺苷酸合成酶)表达式的影响。
在经腹腔给药仅20IU Mu IFN-α就在外围血液单核细胞和粒细胞上显著增加H-2-Kd抗原表达式的条件下，经in/or途径用高达20,000IU的Mu IFN-α治疗DBA/2小鼠(H-2Kd)并不显著地增加外围血液淋巴细胞、单核细胞或粒细胞上的H-2-Kd表达式。单核细胞上的表达式确实略微受到抑制。
同样，通过in/or途径用高达20.000IU的Mu IFN-α治疗小鼠对Ly6A/E抗原的表达式没有显著的影响，而该抗原表达式在经胃肠道外途径用Ⅰ型IFN治疗后在各种淋巴样细胞的表面上被显著增强(Damout等人,J.Immunol.,1986,137:201-210)。通过in/or途径用200或20,000IU的Mu IFN-α或Hu IFN-α1-8获得相似的结果。
用少至20IU的Mu IFN-α经腹腔注射治疗Swiss鼠或DBA/2小鼠导致在外围血液单核细胞和脾细胞两种细胞中2′-5′-寡腺苷酸合成酶的活性显著增加。相反，在同一实验中通过in/or途径用高达20,000IU的Mu IFN-d进行治疗的小鼠没有显著地增加2′-5′-寡腺苷酸合成酶活性的表达式。另外，在开始IFN治疗后长达10天的时间里在任何受检验的时刻，经in/or途径用200或20,000IU的MuIFN-α或MU IFN-α1-8进行的治疗对2′-5′-寡腺苷酸合成酶的活性都没有显著影响。实施例5口粘膜给药后干扰素的生物利用率为了检验IFN的生物利用率和药物动力学，用125I标出最高比放射性的单次高剂量的重组IFN-α来治疗药物-血液体积比对这种研究最有利的小鼠。
将70×106IU Hu IFN-α1-8的纯制剂重新溶解在1.4ml的PBS中，并且象Mogensen等人介绍的那样(Int.T.Cancer,1981,28:575-582)采用Hunter和Greenwood介绍的改良氯胺T法(Nature,1962,194:495-496)进行碘处理。
125I标记的Hu IFN-α1-8(批号CGP35269-1)在受VSV攻击的人体WISH细胞上检测时呈现2×107IU/ml的生物学活性，而在受VSV攻击的小鼠L929细胞上检测时呈现1×106IU/ml的生物学活性。
6至7周令的雌性Swiss鼠用相当于1×106鼠IU的2×107IU125I Hu IFN-α1-8(1.0369×107cpm/小鼠)经iv、ip注射或经in/or途径治疗。在指定的时间点，每组杀死3只鼠，收集血液并确定体积。分离并收集动物的肾、肝、肺、脾和胃/食管，打上印迹，并称重，精确到±0.1μg。利用γ-计数器分别确定每个样品的放射性。然后，借助离心(800g×10分钟，4℃)分离全血，收获血清，记数并在-80℃下冷冻。然后，如上所述利用标准的生物检定法在人体WISH细胞和小鼠L929细胞上检测血清的IFN/含量。然后，借助亲和层析法分离存在于血清样品中的放射性物质，并借助SDS-PAGE法进行分析。
在每只鼠静脉注射1.0369×107cpm带125I标记的Hu IFN-α1-8之后5分钟，在动物的外围血液中检测到非常高水平的放射性(＞2×106cpm/ml)。在第15分钟和30分钟，存在于全血中的放射性逐步降低。腹腔注射1.0369×107cpm的125I HU IFN-α1-8之后5分钟，在动物的外围血液中检测到的放射性的水平大约比静脉注射后检测到的低20倍。在注射后第15和30分钟的放射性水平逐步增加。在经in/or途径完成125I IFN-α1-8给药后第5、10或15分钟在动物血液中检测到的放射性水平显著低于在腹腔注射相同剂量带放射标记的IFN之后的给定时刻经定时间检测到的放射性水平。就所有三种给药途径而言，经in/or完成带125I标记的IFN-α1-8给药后，在血清中检测到的放射性水平比在全血中检测到的高。与同样体积的血清相比，每毫升全血中检测到的放射性水平较低反映出在去掉全血中细胞成分之后计数的血清实际体积较大。
如上所述，采用标准生物检定法检测来自这项研究中所有小鼠的血清样品以确定存在带生物活性的IFN，结果表明在所有试验的时间点上，静脉或腹腔注射125I Mu IFN-α1-8的所有动物的血清中都有易于检测的带生物活性的IFN。反之，在经in/or途径进行IFN给药后在任何试验的时间点在所有动物的血清中都没有检测到带生物活性的IFN，尽管在这些动物的血清中有较高水平的放射性存在。
为了确定在经125I Mu IFN-α1-8治疗的动物血清中检测到的放射性物质是否确实代表天然IFN，样品用蛋白质A-G琼脂糖进行免疫沉淀，以便将存在于样品中的免疫球蛋白沉淀出来，用亲和纯化的多克隆抗干扰素-α的抗体处理后再次进行免疫沉淀。然后，对样品进行上述的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分析。
对静脉或腹腔注射125I MU IFN-α1-8后血清中放射性物质进行的SDS-PAGE分析揭示出一条均匀的迁移带，其中电泳迁移率与未注射125I MU IFN-α1-8的完全一致。估计该物质的表现分子量约为20000道尔顿，它与天然的Hu IFN-α1-8的分子量完全相符。完全相符。反之，来自经in/or用125I Mu IFN-α1-8治疗的小鼠的血清样品无一包含任何表观分子量与天然IFN的分子量相似的物质，既使在每个凝胶上加入完全相同量的放射性物质。
带放射标记物质的组织分布揭示在静脉注射125I Mu IFN-α1-8后5分钟，动物的肾脏中有非常高水平的放射性，在肝、肺和脾脏中也有高水平的放射性。随后发现存在于这四个器官中的放射性水平在15和30分钟逐渐降低。相反，在15和30分钟时，胃中的放射性水平逐渐增高，达到与静脉注射后30分钟时动物血清中存在的放射性差不多的水平。
借助腹腔注射完成125I Mu IFN-α1-8给药导致在15分钟内受检的所有组织中放射性均达到峰值水平，接下来在第30分钟降低。类似地，经in/or途径完成125I Hu IFN-α1-8给药导致在15分钟后被研究的所有组织中的放射性均达到峰值水平，30分钟时存在的放射性水平有些下降。经in/or途径完成125I Hu IFN-α1-8给药后存在于胃/食管中的放射性水平比在任何其他器官中检测到的水平高一个数量级，而且显著高于借助静脉或腹腔途径完成同样剂量的带放射标记的Hu IFN-α1-8给药后存在于这些组织中的放射性水平。实验例6鼻内/口内给药后干扰素的药物动力学为了准确地测定Hu IFN-α1-8的药物动力学，以每只小鼠1.0369×107cpm的剂量用125I HU IFN-α1-8经iv、ip或in/or途径给小鼠治疗，并在24小时期间内的一系列时间点测定在全血和血清中存在的放射性水平。
静脉注射后存在于小鼠血液中的125I标记的Hu IFN-α1-8的药物动力学曲线十分接近对数清除曲线。这个结果与以前利用密切相关的分子(即重组人αA/D(Bgl))进行的小鼠研究(Bohoslawed等人；J.IFN Res.,1986,6:207-213)的结果相符。根据浓度时间曲线下的面积计算出的生物可利用物质的量也与人αA/D的那个量相似。静脉注射125I HU IFN-α1-8后观察双相对程清除曲线(其为通过肾脏清除的物质的特征)，结果与实施例6的结果一致。腹腔注射后，带125I标记的IFN-α1-8的药物动力学与以前报导的肌肉注射IFN的结果十分相似。
在经静脉或腹腔注射带125I标记的IFN-α1-8后，在所有动物的血清中都存在易于检测的带生物活性的IFN。虽然在带125I标记的IFN-α1-8经in/or给药后在动物血清中不能检测到抗病毒活性，但是在这些动物中仍然观察到有统计意义的抗致死量EMCV感染的保护作用(表4)。
表4用125I-IFN-α进行单一治疗对注射了EMCV的swiss小鼠存活率的影响
讨论我们用明确定义的急性病毒感染的临床前模型所获得的结果提供了明确的证据支持采用低剂量经口粘膜给药的IFN治疗人全身性病毒急性感染的“原理验证”，并且表明在这个模型中多种IFN-α子型的天然混合物和单一重组的IFN-α异型(如Mu IFN-α)两者都发挥有统计学意义的抗病毒活性。天然的Mu IFN-α/β和HuIFN-α1-8经口粘膜给药时似乎是同等有效的。重组Mu IFN-β和Mu IFN-γ也显示有相似的抗病毒活性。
将给定类型和剂量的IFN经口粘膜途径给药时所得到保护程度与全身给药(腹腔注射)后获得的结果相比较，比较结果表明在某些病例中IFN经胃肠道外给药在某种程度上比经口粘膜给药更有效，而在其他病例中则不然。
生物标志试验研究的结果非常清楚地表明三种受试的生物标志(Ⅰ类MHC抗原、Ly6A/E抗原、和2′-5′-寡腺苷酸合成酶活性)都没有充分地反映出经口粘膜途径给药的IFN-α所呈现的非常显著的抗病毒活性。
继腹腔内(ip)注射少至仅20IU的IFN-α之后开始的所有试验中观察到三种IFN诱导的全部蛋白质的表达式中都有非常显著的增加，而多达20,000IU的IFN-α经口粘膜途径给药后却没有任何可测量的效果，两者之间的反差是显著的。
虽然我们不能排除在较早的或中间的时间点上有可能观察到对一种或另一种生物标志的影响，但是，这种情况似乎是不可能的，因为IFN影响这些蛋白质的基因代码的转录，因此人们在IFN治疗后只有经过很长的时间才可能看到对这些生物标志的影响。
另外，虽然我们不能排除在用IFN-α经in/or途径治疗后观察到对许多其他受IFN诱导的蛋白质之一的系统影响的可能性，但这似乎不可能，因为这将意味着差动调节某些IFN诱导的基因的表达式。然而，完全有可能在IFN-α经in/or途径给药后在局部(例如在鼻淋巴细胞中)观察到对IFN生物标志的影响。
与对所研究的生物标志没有可检测的影响相符，即使在用高达20,000IU的IFN-α治疗的动物中也没有观察到对任何在IFN经口粘膜给药治疗期间所监测的血液学或血液化学参数的一致影响。
药物动力学-生物活性研究的结果很清楚地表明采用比以前所用方法敏感一个数量级的检测方法，在外围血液中没有可检出的IFN循环的条件下，单次量的带放射性标记的Hu IFN-α1-8经口粘膜给药后可获得统计学上有意义的抗病毒效果。与这些结果相一致，经口粘膜给药的IFN发挥抗病毒活性的程度似乎遵循经典的剂量-反应关系。
在带125I标记的IFN-α1-8经in/or给药之后在动物的全血和血清中都发现容易检测到的带放射性标记的物质。这些结果与以前研究的结果(即在口服大量的未带标记的IFN后在动物的血清中仍未检测出IFN)恰好相反。但是，经in/or给药后在全血和血清中检测出的放射性物质是无生物活性的。此外，SDS-PAGE分析的结果表明这种物质是低分子量的，并且很可能反映继IFN在胃和小肠中消化之后对降解产物的吸收作用。在in/or给药后带放射性标记的物质的组织分布的分析结果表明胃中的放射性水平明显地高于受检验的任何其他器官。我们的结果十分清楚地表明即使继in/or给药后带生物活性的IFN不被吸收，这种疗法仍能在体内发挥有统计意义的抗病毒活性。
虽然不希望使观察到的有益作用受任何现有的机理的束缚，但我们的结果意味着经口粘膜给药的IFN借助目前尚不明确的新机制发挥其抗病毒作用，这种机制不包括外源给药的IFN的直接作用，或内源性IFN的诱导作用。缺乏可检水平的循环IFN或缺乏可检水平的三种受检生物标志都支持这一观点。似乎这种机制至少可以部分地借助刺激鼻咽腔和口腔周围丰富的淋巴样组织发挥作用。因为我们已证明经口粘膜给药的IFN在效力上至少与全身给药的IFN相差无几，所以我们的试验结果强有力的支持在治疗病毒急性感染时经口粘膜途径实施IFN给药。这对于IFN的临床应用可能有重要意义。
本领域技术人员可以明确看出，虽然为了清晰和便于理解已对本发明作了相当详尽的描述，但是不脱离说明书中公开的本发明的精神和范围可以对本文描述的实施方案和方法作出各种修饰和改动。
权利要求
1．一种刺激哺乳动物体内宿主防御机制的方法，该方法包括经口粘膜接触将有效量的干扰素提供给哺乳动物，所述量从大约5000IU至大约20×106IU，条件是所述量当经胃肠道外投用时在哺乳动物体不诱发病理学反应。
2．一种治疗哺乳动物体内自身免疫、分支杆菌、神经退化、寄生虫或病毒感染等病症的方法，该方法包括将治疗有效量的干扰素经口粘膜接触提供给哺乳动物，其中所述量是从大约1500IU到大约20×106IU，条件是所述量经胃肠道外给药时不在哺乳动物体内诱发病理学反应。
3．根据权利要求1所述的方法，其中干扰素的有效剂量是以单次量给药的。
4．根据权利要求1所述的方法，其中干扰素的有效剂量是在足以诱发相当于单次量的病理学反应的时间里以多次较小剂量给药的。
5．根据权利要求1所述的方法，其中干扰素的有效剂量是在不诱发病理学反应的条件下在足以引起相当于单次量的反应的时间里连续给药的。
6．根据权利要求1所述的方法，其中干扰素的总剂量是从大约5000IU至大约20×106IU的干扰素。
7．根据权利要求1所述的方法，其中干扰素的剂量是从大约1×104IU到大约20×106IU干扰素。
8．根据权利要求1所述的方法，其中干扰素的剂量是从大约1×104IU到大约1×106IU干扰素。
9．根据权利要求1所述的方法，其进一步包括其他细胞因子或干扰素诱导剂的给药。
10．根据权利要求1所述的方法，其中干扰素包括Ⅰ型干扰素。
11．根据权利要求10所述的方法，其中干扰素选自IFN-α、IFN-β、IFN-ω、共有IFN、以及它们的混合物。
12．根据权利要求11所述的方法，其中IFN-α包括重组IFN-α。
13．根据权利要求1所述的方法，其中干扰素包括Ⅱ型干扰素。
14．根据权利要求13所述的方法，其中Ⅱ型干扰素包括γ-IFN。
15．一种治疗哺乳动物的关节炎、糖尿病、狼疮、多发性硬化、麻风、结核、脑炎、Creutzfeldt-Jakob综合症、疟疾、宫颈癌、生殖器疱疹、乙型和丙型肝炎、HIV、HPV、HSV-1及HSV-2感染的方法，该方法包括通过口腔口粘膜接触将治疗有效量的干扰素提供给哺乳动物，其中所述量是大约1500IU到大约20×106IU，条件是所述量在经胃肠道外给药时不在哺乳动物体内诱发病理学反应。
16．根据权利要求15所述的方法，其中干扰素的有效剂量是以单次量给药的。
17．根据权利要求15所述的方法，其中干扰素的有效剂量是在不诱发病理反应的条件下在足以引起相当于单次量的治疗反应的时间里以多次较小剂量给药的。
18．根据权利要求15所述的方法，其中干扰素的剂量是在不诱发病理反应的条件下在足以引起相当于单次量的治疗反应的时间里连续给药的。
19．根据权利要求15所述的方法，其中干扰素的总剂量是从大约500IU至大约20×106IU的干扰素。
20．根据权利要求15所述的方法，其中干扰素的剂量是从大约1×104IU到大约20×106IU的干扰素。
21．根据权利要求15所述的方法，其中干扰素的剂量是从大约1×104IU到大约1×106IU的干扰素。
22．根据权利要求15所述的方法，该方法进一步包括联合治疗。
23．根据权利要求15所述的方法，该方法进一步包括其他细胞因子或干扰素诱导剂的给药。
24．根据权利要求15所述的方法，其中干扰素包括Ⅰ型干扰素。
25．根据权利要求24所述的方法，其中干扰素选自IFN-α、IFN-β、IFN-ω、共有IFN，和它们的混合物。
26．根据权利要求25所述的方法，其中IFN-α包括重组IFN-α。
27．根据权利要求15所述的方法，其中干扰素包括Ⅱ型扰素。
28．根据权利要求27所述的方法，其中干扰素包括γ干扰素。
29．干扰素在制备经口腔粘膜接触刺激哺乳动物的宿主防御机制的药物中的应用，该药物包含治疗有效量的干扰素，其中所述量从大约1500IU到大约20×106IU，条件是所述量经胃肠道外给药时不在哺乳动物体内诱发病理学反应。
30．根据权利要求29所述的应用，其中宿主防御机制抵御病毒、自身免疫、分支杆菌、神经退化或寄生虫引起的条件反射。
31．根据权利要求29或30所述的应用，其中药物包含单次量的干扰素。
32．根据权利要求29或30所述的应用，其中药物包含足以引起相当于单次量的刺激作用的多份较小剂量的干扰素。
33．根据权利要求29至32中任何一项所述的应用，其中药物在足以引发相当于使用单一剂的刺激作用的时间里提供无毒剂量的连续给药。
34．根据权利要求29至33中任何一项所述的应用，其中药物包含另一种细胞因子或干扰素诱导剂。
35．根据权利要求29至34中任何一项所述的应用，其中药物适合大约5000IU到大约20×106IU的干扰素的给药。
36．根据利用要求35所述的应用，其中药物适合大约1×104IU到20×106IU的干扰素的给药。
37．根据利用要求36所述的应用，其中药物适合1×104IU到1×106IU的干扰素的给药。
38．根据权利要求29至37中任何一项所述的应用，其中药物包括另一种适于同时、分别或后续治疗的治疗剂。
39．根据权利要求38所述的应用，其中治疗剂是另一种抗病毒制剂。
40．根据权利要求29至39中任何一项所述的应用，其中干扰素是Ⅰ型干扰素。
41．根据权利要求40所述的应用，其中干扰素选自IFN-α、IFN-β、IFN-ω、共有IFN，以及它们的混合物。
42．根据权利要求41所述的应用，其中干扰素是IFN-α。
43．根据权利要求29至39中任何一项所述的应用，其中干扰素是Ⅱ型干扰素。
44．根据权利要求43所述的应用，其中Ⅱ型干扰素是IFN-γ。
45．根据权利要求40或43所述的应用，其中干扰素是重组物质。
46．根据权利要求29至45中任何一项所述的应用，其中宿主防御机制抵御关节炎、糖尿病、狼疮、多发性硬化、麻风、结核、脑炎、Creutzfeldt-Jakob综合症、疟疾、宫颈癌、生殖器疱疹、乙型和丙型肝炎、HIV、HPV、HSV-1及HSV-2。
47．刺激哺乳动物体内宿主防御机制的干扰素组合物，该组合物包括适合口腔粘膜接触的治疗有效量的干扰素，所述量是从大约1500IU到大约20×106IU，条件是所述量经胃肠道外给药时不在哺乳动物体内引发病理学反应。
48．根据权利要求47所述的组合物，该组合物以单位剂量形式包含5000IU到大约20×106IU的干扰素和医药上可接受的载体。
49．根据权利要求48所述的组合物，该组合物包含大约1×104IU到大约20×106IU的干扰素。
50．根据权利要求49所述的组合物，该组合物包含大约1×104IU到大约1×106IU的干扰素。
51．根据权利要求47所述的组合物，其中宿主防御机制抵御病毒、自身免疫、分支杆菌、神经退化或寄生虫引起的条件反射。
52．根据权利要求51所述的组合物，该组合物包含单次量的干扰素。
53．根据权利要求51所述的组合物，该组合物包含足以引发相当于单次量的刺激作用的多份较小剂量的干扰素。
54．根据权利要求47至53中任何一项所述的组合物，该组合物在足以引发相当于单次量的抗病毒反应的时间里提供无毒剂量的连续给药。
55．根据权利要求47至54中任何一项所述的组合物，该组合物包括另一种细胞因子或干扰素诱导剂。
56．根据权利要求47至55中任何一项所述的组合物，该组合物包括另一种适于同时、分别或后续治疗的治疗剂。
57．根据权利要求56所述的组合物，其中治疗剂是另一种抗病毒制剂。
58．根据权利要求47至57中任何一项所述的组合物，其中干扰素是Ⅰ型干扰素。
59．根据权利要求58所述的组合物，其中干扰素选自IFN-α、IFN-β、IFN-ω、共有IFN，以及它们的混合物。
60．根据权利要求59所述的组合物，其中干扰素是IFN-α。
61．根据权利要求47至57中任何一项所述的组合物，其中干扰素是Ⅱ型干扰素。
62．根据权利要求61所述的组合物，其中Ⅱ型干扰素是IFN-γ。
63．根据权利要求58或61所述的组合物，其中干扰素是重组物质。
64．根据权利要求47至63中任何一项所述的组合物，其中宿主防御机制抵御关节炎、糖尿病、狼疮、多发性硬化、麻风、结核、脑炎、Creutzfeldt-Jakob综合症、疟疾、宫颈癌、生殖器疱疹、乙型和丙型肝炎、HIV、HPV、HSV-1及HSV-2。
全文摘要
一种刺激哺乳动物体内宿主防御机制的方法,该方法经口腔粘膜接触将有效量的干扰素提供给哺乳动物。干扰素的给药量小于经胃肠道外给药时诱发病理学反应的量。
文档编号A61K31/00GK1218409SQ97194504
公开日1999年6月2日 申请日期1997年5月5日 优先权日1996年5月9日
发明者迈克尔·格拉德·托文 申请人:太平洋制药控股公司